Das legt zumindest eine kürzlich von SATOH A. und seinem Team durchgeführte Studie nahe. Die Forscher untersuchten die Kollagensynthese bei Axolotln, Amphibien mit transparenter Haut und hohen regenerativen Fähigkeiten. Sie verwendeten verschiedene Bildgebungstechniken bei Axolotln unterschiedlicher Größe (von 5 bis 12 cm), um die Bildung der Dermis während des Wachstums zu verfolgen, einschließlich spezifischer fluoreszierender Sonden für Kollagen (DAR und DAF). Diese beiden Sonden unterscheiden sich in ihrer Struktur und Affinität: DAR ist ein kleines Peptidmolekül, das in der Lage ist, teilweise entfaltete α-Helices von Kollagen zu erkennen, was es zu einer ausgezeichneten Sonde für die Markierung von Prokollagen macht, der noch in der Montage befindlichen unreifen Form. Im Gegensatz dazu ist DAF ein durch strukturelle Affinität aktivierter Farbstoff, der vorzugsweise reife Fasern anvisiert, die bereits in einer stabilen Dreifachhelix organisiert sind. Durch die Injektion eines roten Markers (DAR) und dann eines zweiten grünen Markers (DAF) einige Tage später konnten die Forscher alte von neuen Kollagenfasern unterscheiden und gleichzeitig ihren Reifegrad bestimmen. Diese Technik wird als Pulse-Chase bezeichnet und ermöglicht es zu sehen, wo und wann Kollagen produziert wird.
Überraschenderweise beobachteten die Forscher, dass das Kollagen in der Haut von jungen Axolotlen mit einer Größe von 5 cm bereits gut organisiert war in gitterförmig strukturierten Fasern, und das in Abwesenheit von Fibroblasten. Bei der Analyse der Genexpression vonCol1a1, welches für Typ-I-Kollagen kodiert, detektierten sie ein intensives Signal in den Keratinozyten der Basalschicht der Epidermis, die in direktem Kontakt mit der Dermis steht. Die Anwesenheit von Prokollagen, einer unreifen Form von Kollagen, wurde ebenfalls an dieser Stelle mittels Immunfluoreszenz nachgewiesen. Schließlich bestätigte die Elektronenmikroskopie, dass diese Keratinozyten tatsächlich Prokollagen enthielten, das bereit war, durch die basale Membran ausgeschieden zu werden. Im Laufe des Wachstums des Axolotls beobachteten die Forscher mit Hilfe von histologischen Färbungen, insbesondere der Masson-Trichrom-Färbung, einer beliebten Methode zur Hervorhebung von Kollagenfasern, dass sich die Dermis verändert und komplexer wird. Aus einer einfachen anfänglichen Schicht wird eine gut organisierte Struktur in drei Schichten
Stratum baladachinum (SB): Schicht direkt unter der Epidermis, wenig dicht und von den Keratinozyten synthetisiert.
Stratum spongiosum (SS): Zwischenschicht, in der Zellen aus dem Mesoderm, insbesondere Fibroblasten, zu erscheinen beginnen.
Stratum compactum (SC): Tiefe, dichte und regelmäßige Schicht mit einem sehr strukturierten Netzwerk von orthogonalen Fasern.
Erst ab 8 cm haben Wissenschaftler die Ankunft von mesenchymalen Zellen, also Fibroblasten, festgestellt. Diese Zellen dringen in die bestehende Kollagenmatrix ein, dank bestimmter Matrix-Metalloproteinasen (MMPs), Enzyme, die in der Lage sind, Kollagen lokal zu verdauen, um die Zellinvasion zu ermöglichen. Einmal im Dermis eingesetzt, entfalten die Fibroblasten Filopodien, Ausdehnungen, die sich zwischen die bestehenden Kollagenfasern einfügen. Mit diesen Strukturen verändern, verdicken und reorganisieren sie das ursprüngliche Netzwerk, das von den Keratinozyten gebildet wurde. Die Verwendung der Elektronenmikroskopie ermöglichte es, die Entwicklung der Kollagenfasern während des Wachstums der Axolotl zu verfolgen. Bei 5 cm sind die Fasern dünn und isoliert, während sie bei 12 cm deutlich dicker und verflochten sind, insbesondere in der Stratum compactum. Diese Veränderung zeugt von der Arbeit der Fibroblasten an der ursprünglich von den Keratinozyten produzierten Matrix. Die folgende Abbildung fasst die strukturelle Entwicklung des Kollagens zusammen.